简述微生物细胞的培养方法及其优缺点。

（1）固体培养（solid-state culture）在固体培养基表面上培养。用于菌种分离纯化、种子保藏和制备。4℃可藏3~6月。
优点：简单，适于小规模培养；
缺点：大规模生产潜力小，不均匀，不便于监控。
（2）液体培养（liquid-state culture）
菌体在培养液中处于悬浮状态，导入培养液空气中的氧通过气-液界面传质进入液相，扩散到细胞内部。
优点：液体培养易获得混合均匀的菌体悬浮液，便于监控，易放大至工业规模。液体培养基本上服了固体培养的缺点，为大量培养微生物的一个重要方法
（3）连续培养（continuous culture）
M培养至指数生长期后期以恒速连续通入培养基与无菌空气并立即搅匀，同时以溢流方式以同样速度不断流出培养物。使容器中培养物达到动态平衡，其中M可长期保持在指数期和恒定的生长速率上，形成连续生长
优点：可以不断提供具有一定生理状态的，始终以最高生长速度生长的微生物细胞。
缺点：
①染菌；
②收率和产物浓度比分批培养低，不利下游操作；
③营养物质利用率低，生产成本高；
④对设备要求较高，需复杂检测和控制系统；
⑤菌种退化造成减产。
（4）中间补料培养（fed-bath culture）
又称为半连续培养（semicontinuous culture）、流加培养、补料分批培养等。在发酵工业中广泛采用，如生产次级代谢产物、细胞高密度培养。
中间补料培养根据菌株生长和初始培养基的特点，在分批培养的某些阶段适当补加培养基，使菌体或其代谢产物的生产时间延长
优点：
①可消除底物抑制；
②实现高密度培养，细胞密度可达150g干细胞/L；
③延长次代谢产物的生产时间；
④稀释有毒代谢产物；
⑤降低染菌和避免遗传不稳定性。
（5）同步培养（synchrorious culture）
同步培养使培养中细胞同时分裂，即同步生长。群体行为和个体行为取得一致，就可以利用研究群体的方法来研究个体。
优点：不影响细胞代谢，细胞生命活动正常。
（6）混合培养（mixed culture）
优点：利于生物转化

略